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Amicon® Ultra超濾管 | 使用過程中的常見問題
更新時間：2024-07-25 瀏覽次數：3538
之前我們有幾期文章介紹了使用默克Amicon® Ultra超濾管的應用場景（分離外泌體、濃縮病毒），有很多老師反饋了一些超濾管使用時的問題，針對其中問的比較多的問題，小編特意進行了收集、整理。今天給大家介紹超濾管的使用過程中，離心力g與RPM的換算及常見問題的解答。
測量轉子的半徑
從離心機廠家文件上查閱轉子半徑，或像以下圖示這樣自己測量轉子半徑。
采用列線圖計算RPM
繪制轉子半徑和建議的RCF（離心力g）圖，連線確定RPM。
此列線圖實際是通過右側的公式計算得出的。
Q1：Amicon® Ultra超濾管的膜材質是什么？
A1：Amicon® Ultra超濾管的膜材質為默克密理博Ultracel®再生纖維素膜，生產工藝嚴格，截留分子量明確而精準，蛋白吸附損失最小。
Q2：如果要用超濾的方法分離兩種蛋白，那么這兩個蛋白的大小需要相差多少？
A2：按照經驗，建議兩個蛋白的分子量要相差一個數量級（10倍）。
Q3：Amicon® Ultra超濾管可以用于病毒濃縮么？
A3：可以。對于慢病毒推薦Amicon® Ultra 100 kDa； 對于腺病毒推薦Amicon® Ultra 50kDa。具體的操作步驟可以參考病毒濃縮純化試劑盒FTLV00003和FTAV00003的產品使用說明書。另提供AAV（腺相關病毒）的制備方法供參考。
Q4： Amicon® Ultrar超濾管可以用酒精消毒滅菌么？
A4：Amicon® Ultra與70%乙醇是兼容的，但是對滅菌處理的具體方法沒有做相關的測試，所以無法提供更進一步的參考信息。建議采用Ultrafree無菌離心管對濃縮后的樣品進行過濾除菌。
Q5：Amicon® Ultra超濾裝置是否可以用于高壓滅菌？
A5：Amicon® Ultra都是采用熱封設計，不可以用高壓高溫滅菌。
Q6：Amicon® Ultra超濾管是否不含RNA酶？
A6：不保證超濾管不含RNA酶，建議用0.1% DEPC在37度浸泡2h，以滅活RNA酶；殘留的DEPC可以用Milli-Q®超純水洗滌除去。
Q7：用Amicon® Ultra超濾管去除去污劑是有什么需要注意的嗎？
A7：去污劑因其性質，當濃度大于臨界微團濃度（Critical Micelle Concentration, CMC）時，去污劑分子會聚集形成微團而改變分子構象，這有可能會影響去污劑的去除效果。
Q8：蛋白在濃縮時出現了沉淀，如何改進？
A8：蛋白如果濃縮過快或者過度濃縮都有可能引起蛋白沉淀。建議蛋白濃縮后的最終濃度不超過20mg/ml。對于對濃縮速度敏感而容易沉淀的蛋白，建議的改進方法是：
-
離心力降為推薦離心力的30%-50%；
-
改用截留分子量更大的超濾管（如原本選用10k，此時可以選擇30k）；
-
在濃縮過程中取出超濾管，用槍頭反復吹吸幾次后再繼續濃縮；
-
體積較大的樣品可考慮選用攪拌式超濾杯，減少沉淀的發生。
Q9：有時候用超濾離心管連水都離不下來，可能是什么原因？
A9： Amicon® Ultra超濾膜中含有微量甘油。 如果出現這種情況，請先用0.1N NaOH清洗再離心。最后用緩沖液或Milli-Q®水再次清洗后甩干。清洗后的濾膜應立即使用，如暫時不用，請保持潤濕狀態，避免重新干燥。
Q10：說明書中推薦在室溫下進行離心，考慮到蛋白的穩定性，是否可以在4℃進行離心？
A10：可以，但是低溫會增加蛋白樣品的粘性，導致流速減慢，建議可將離心時間延長到原來的1.5倍。
Q11：濃縮后發現濃縮液中沒有目的蛋白，可能的原因有哪些？
A11：首先，Amicon® Ultra超濾管的蛋白zui低起始濃度為25ug/ml。請確保樣本的起始濃度大于這個濃度。其次，如果問題仍然出現，請不要丟棄樣本濾過液以便用于分析可能的原因：
· 如果目的樣本在濾過液中，那么請排查：
a）是否選擇了合適截留分子量的超濾管（目的蛋白分子量的1/2或者1/3）？
b）使用的離心力是否是在限定范圍內？如果使用的是rpm，請換算成相應的g離心力，具體換算方法請垂詢。
c）離心機最近是否有校準過？
d）是否shou次嘗試這個蛋白？如果能確保用同樣的超濾管對其它蛋白成功操作的話，那么有可能是這個目的蛋白的原因。有時蛋白會因其本身的一些特性（構象差異）而影響濃縮效果，建議選用更小截留分子量的超濾管（如原本選用30k，此時可以選擇10k）。
· 如果目的樣本也不在濾過液中，那么：
a）蛋白樣本起始濃度是否大于25ug/mL？
b）用來確定樣本濃度的方法是什么？是否可信？
c）目的蛋白是不是沉淀了？如果是，具體解決方法請參考上面的關于蛋白沉淀問題的解釋。
Q12：如何對超濾管進行去除內毒素的處理？
A12：提供的超濾管是沒有經過去內毒素處理的，同時由于內毒素通常以多聚體的形式存在，大小在10-1000KD之間不等，在超濾的過程中是無法去除的。可在實驗前通過先用0.5MNaOH預清洗，隨后用Milli-Q®水/緩沖液清洗的步驟去除大部分內毒素。關于針對Amicon®、Microcon®、Centricon®嘗試過的內毒素去除方案。
Q13：用濃縮后的蛋白做下游分析時發現有干擾，可能有哪些原因？
A13：Amicon®Ultra超濾膜含有微量甘油。如果此成分干擾分析，可用緩沖液或Milli-Q®水預清洗。如果干擾仍然存在，用0.1NNaOH清洗，然后用緩沖液或Milli-Q®水再次清洗后甩干。
Q14：懷疑濃縮過程中目的蛋白和超濾膜之間可能存在非特異性吸附，如何改善？
A14：Amicon® Ultra超濾管使用的是再生纖維素膜，這種材質是蛋白吸附zui低的超濾膜。但是對于一些疏水性蛋白或非極性蛋白，它們和膜的非特異吸附可能會增強。對于這種情況，可以嘗試在實驗前對超濾管進行封閉處理，也可以嘗試換成Amicon® Ultra 0.5或2來進行實驗，通過減小膜面積來降低非特異性吸附。
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